Bulion do izolacji enterokoków (bulion enterokoków) jest pożywką wzbogacającą do izolacji enterokoków z próbek zawierających liczną mikroflorę towarzyszącą. Wiele mikroorganizmów, takich jak saprofityczne Neisseria, gronkowce, haemophilus, paciorkowce niehemolizujące i niektóre enterobakterie, ulega całkowitemu lub częściowemu zahamowaniu.
Kazeina i peptony sojowe są źródłem składników odżywczych niezbędnych do wzrostu mikroorganizmów. Dekstroza jest fermentowalnym węglowodanem, źródłem węgla i energii. Chlorek sodu utrzymuje równowagę osmotyczną. Cytrynian sodu jest dodatkowym źródłem węgla. Azydek sodu jest inhibitorem. Siarczan sodu po redukcji tworzy H2S. L-cystyna zmniejsza potencjał redoks poprzez usuwanie tlenu, utrzymując niską wartość Eh. Fiolet krystaliczny jest wskaźnikiem pH.
Zaszczepić i inkubować przez 18–24 godziny w temperaturze 35°C w normalnej atmosferze. O rozwoju enterokoków decyduje tworzenie się ziarnistego osadu na dnie probówki, a ciecz nad nim jest pozbawiona osadu lub lekko mętna. Na tym etapie przeprowadza się barwienie metodą Grama i posiew na płytki z krwią (agar trypticasein soy agar (nr kat. 1068) lub baza agaru z krwią (nr kat. 1108)) w celu określenia rodzaju hemolizy i wyizolowania czystych kultur. Aby odróżnić paciorkowce od pneumokoków, należy umieścić krążki z bacytracyną i optochiną na zaszczepionym obszarze płytek agarowych z krwią i inkubować w zalecanych warunkach przez 18–24 godzin w temperaturze 35±2°C.
Wykonać barwienie metodą Grama, test katalazy i test rozpuszczalności w żółci na reprezentatywnych koloniach pobranych z płytek agarowych z krwią lub hodowli bulionowej.
Obecność łańcuchów ziarniaków Gram-dodatnich o różnej długości, hamowanych przez niskie stężenia bacytracyny, ujemnych dla katalazy i nierozpuszczalnych w żółci lub solach żółciowych, pozwala na wstępną identyfikację paciorkowców beta-hemolizujących grupy A. Ostateczną identyfikację paciorkowców można przeprowadzić osiąga się za pomocą innych testów biochemicznych, takich jak hydroliza eskuliny, hydroliza pirogronianu itp. Ponadto typowanie serologiczne można przeprowadzić przy użyciu metod antysurowic Lancefielda lub bardziej tradycyjnych metod koaglutynacji Edwardsa i Larsona.
Badanie mikrobiologiczne
Poniższe wyniki uzyskano stosując pożywkę na hodowlach testowych po inkubacji w temperaturze 35±2°C i obserwowano po 18–24 godzinach.
|
Mikroorganizmy |
|
|
Escherichia coli ATCC 25922 |
Zahamowany |
|
Enterococcus faecalis ATCC 19433 |
|
|
Enterococcus faecium ATCC 27270 |
Baza bulionu Bolton Selective -
BoltonaSelektywny bulion wzbogacający (baza) do mikrobiologii
Kot. Nr 1.00068.0500
Opakowanie - 500 g
Selektywny bulion wzbogacony Bolton do wykrywaniaCampylobakter
Zasada działania
Bulton Selective Broth zawiera składniki odżywcze, które pomagają zidentyfikować nawet uszkodzone komórki Campylobacter. Nie jest wymagane tworzenie warunków mikroaerofilnych. Wprowadzenie do pożywki selektywnego dodatku hamuje rozwój towarzyszącej mikroflory Gram-dodatniej i Gram-ujemnej.
Skład (g/l)
Pepton mięsny 10,0; hydrolizat albuminy mleka 5,0; ekstrakt drożdżowy 5,0; chlorek sodu 5,0; kwas ketoglutarowy 1,0; pirogronian sodu 0,5; wodorosiarczyn sodu 0,5; węglan sodu 0,6; hemina 0,01.
Przygotowanie
Rozpuścić 13,8 g w 500 ml wody destylowanej. Autoklawuj przez 15 minut w temperaturze 121°C i schłódź do 45°C. Dodać aseptycznie 25 ml lizowanej krwi końskiej i zawartość 1 butelki suplementu selektywnego Boltona Rosół Selektywny Suplement (Kot.N 1.00079.0001) do bulionu Bolton. Dokładnie wymieszaj i rozlej bulion do sterylnych butelek z zakrętkami. Po dodaniu próbki pomiędzy zakrętką a poziomem bulionu powinien pozostać około 2 cm prześwit.
pH 7,4 ±0,2 w 25°C.
Przygotowane podłoże w fiolce ma kolor ciemnoczerwony lub prawie czarny.
Przeprowadzenie analizy
Zmieszać 25 g próbki w 225 ml bulionu selektywnego Bolton i inkubować przez 4 godziny w temperaturze 37°C.
Następnie kontynuować inkubację w temperaturze 41,5°C przez 14-44 godziny.
Hodowlę należy wykonać odpowiednio po 18 godzinach i 48 godzinach na podłożu Campylobacter Blood Free Selective Agar (nr kat. 1.00070.0500), które nie zawiera krwi.
Bezpośrednie badanie przesiewowe Campylobacter jejuni I Coli przeprowadzono za pomocą szybkich testów Singlepath® Campylobacter(Nr kat. 1.04143.0001).
Kontrola jakości.
Baza bulionu wzbogacającego Bolton
Zamiar
Płynne podłoże hodowlane stosowane do izolacji Campylobakter z próbek żywności, zgodnie z normą ISO 10272-1:2006.
Opis
Bolton Broth Base to wzbogacający bulion do: Campylobakter z próbek żywności. Podczas przetwarzania i przechowywania produktów spożywczych komórki Campylobakter uszkodzone, ich rozmnażanie i wzrost można stymulować przez podwójną inkubację w bulionie Bolton.
Woda peptonowa z mięsa i hydrolizat laktoalbuminy są źródłami węgla i azotu niezbędnych do wzrostu. Chlorek sodu zapewnia równowagę osmotyczną, a węglan sodu neutralizuje kwas powstały podczas wzrostu mikroorganizmów. Ekstrakt drożdżowy i kwas ketoglutarowy działają jako czynniki wzrostu. Dodatek pirosiarczynu sodu, pirogronianu sodu i heminy neutralizuje toksyczne substancje, które mogą powstawać w pożywce hodowlanej pod wpływem tlenu i pozwala obejść się bez atmosfery mikrotlenowej. Zlizowana krew jest niezbędna do zneutralizowania antagonistów trimetoprimu obecnych w środowisku.
Selektywność etapu wzbogacania optymalizuje się za pomocą selektywnego dodatku (artykuł 06-131-LYO): wankomycyna jest aktywna wobec mikroorganizmów Gram-dodatnich. Cefoperazon działa głównie na bakterie Gram-ujemne. Trimetoprim jest skuteczny przeciwko szerokiemu zakresowi komórek Gram-dodatnich i Gram-ujemnych, a cykloheksymid lub amfoterycyna B są skutecznymi środkami grzybobójczymi.
Przygotowanie
Rozpuścić 13,8 g proszku w 500 ml wody destylowanej, w razie potrzeby podgrzać. Sterylizować w autoklawie przez 15 minut w temperaturze 121°C. Ochłodzić do 47-50°C, w sposób aseptyczny dodać 25 ml lizowanej krwi końskiej i 1 butelkę Suplementu Selektywnego Campylobakter Boltona (artykuł 06-131-LYO). Dobrze wymieszaj. Przygotowane podłoże wlać do odpowiednich pojemników.
Notatka: Jeśli bulion wzbogacający zostanie przygotowany wcześniej, można go przechowywać w temp temperatura pokojowa nie dłużej niż 4 godziny lub w ciemności w temperaturze 3 ± 2°C nie dłużej niż 7 dni.
Technika siewu
Próbkę dodaje się do pożywki w ilości (wagowej lub objętościowej) równej dziewięciokrotności objętości Bolton Selective Enrichment Broth w celu uzyskania stosunku próbka testowa do pożywki wynoszącego 1:10 (w/v lub v/v) i homogenizuje .
Bulton Selective Enrichment Broth nie wymaga inkubacji w warunkach mikroaerobowych, ale należy go stosować w szczelnie dokręconych pojemnikach wypełnionych z wolną przestrzenią na górze mniejszą niż 20 mm.
Inkubować początkową zawiesinę w temperaturze 37°C przez 4-6 godzin, następnie w temperaturze 41,5°C przez 44 ± 4 godziny.
Informacje na temat metod izolacji i identyfikacji można znaleźć w podręczniku ISO lub podręczniku analizy bakteriologicznej (BAM).
Składowanie
Podłoże jest przeznaczone wyłącznie do użytku laboratoryjnego. Pożywkę przechowywać w słoju z szczelnie zamkniętą pokrywką, w ciemnym, suchym i chłodnym miejscu (temperatura od +4°C do 30°C i wilgotność<60%)
Kontrola jakości
Właściciele patentu RU 2553224:
Grupa wynalazków dotyczy biotechnologii. Warianty pożywki do selektywnej akumulacji enterobakterii zawierają hydrolizat trzustkowy mączki rybnej lub pepton mięsny lub hydrolizat trzustkowy mączki rybnej i peptonu mięsnego (w stosunku 1:1), oczyszczoną modyfikowaną żółć (PBM), chlorek sodu, glukozę , monopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantowa w danym stosunku. Wynalazki umożliwiają zwiększenie efektywności akumulacji enterobakterii, selektywnych właściwości pożywki i uproszczenie sposobu otrzymywania pożywki. 3 n.p. akta, 3 tablice, 9 pr.
Wynalazek dotyczy mikrobiologii sanitarnej i klinicznej i może być stosowany do selektywnej akumulacji enterobakterii z wody, produktów spożywczych, materiału klinicznego itp.
Wiodące firmy zagraniczne: Merck „Mikrobiologia”, 2004-2005 s.202; Historia mięsa. Zawartość składników w g/l przedstawia tabela 1.
Do kontroli bakteriologicznej zgodnie z Farmakopeą Państwową Federacji Rosyjskiej, wydanie XII, które reguluje listę pożywek do selektywnego wzbogacania enterobakterii, zapewnia się bulion Mossela (Enterobacteria Enrichment Broth-Mossel) OFS 42-0067-07.
Selektywna akumulacja wszystkich typów enterobakterii w bulionie Mossela wynika z faktu, że wysokie stężenie żółci wołowej w połączeniu z jaskrawą zielenią hamuje rozwój towarzyszącej mikroflory, a glukoza sprzyja rozwojowi enterobakterii. Fosforany sodowo-potasowe zapewniają dużą pojemność buforową w podłożu, co chroni kulturę przed szkodliwym działaniem powstałego kwasu.
Do tej pory w Rosji, ze względu na brak komercyjnej suchej pożywki do selektywnego wzbogacania enterobakterii w praktyce mikrobiologii klinicznej i sanitarnej, stosuje się przygotowany laboratoryjnie bulion Mossela oraz do kontroli czystości mikrobiologicznej pożywek leczniczych - podłoże nr 3 (pożywka wzbogacająca dla bakterii z rodziny Enterobacteriaceae).
Wady laboratoryjnego bulionu Mossela według receptury przedstawionej w Global Fund, wydanie XII, oraz pożywki nr 3 to:
Trudność przygotowania;
Zastosowanie nieoczyszczonej żółci bydlęcej jako czynnika selektywnego – substancji o niepewnym składzie chemicznym, utrudniającym uzyskanie obiektywnych wyników;
Brak domowych preparatów suchych - peptonu i żółci, które mają wysoki stopień przejrzystości roztworów;
Konieczność filtracji w przypadku wykorzystania głównych składników pożywki krajowej produkcji, jako dodatkowy etap w procesie przygotowania;
Słaba zdolność hamowania towarzyszących drobnoustrojów Gram-dodatnich, zapewniająca jednocześnie wzrost enterobakterii;
Zwiększone koszty dla środowiska w przypadku konieczności stosowania importowanych leków.
Najbliższy proponowanemu bulionowi Mossela jest handlowy bulion Mossela (Merck), który składa się z następujących składników, g/l:
Wadą środowiska komercyjnego (Merck) jest:
Niewystarczająca wydajność wzrostu i selektywnej akumulacji wielu enterobakterii;
Niewystarczająco wyrażone właściwości hamujące wobec powiązanych drobnoustrojów;
Ograniczona dostępność.
Celem wynalazku jest stworzenie domowej, suchej pożywki do selektywnej akumulacji enterobakterii, bardziej wydajnej, o wyższych właściwościach selektywnych, zapewniającej dostępność i uzyskanie obiektywnych wyników kontroli bakteriologicznej.
Problem rozwiązuje fakt, że zaproponowano suchą pożywkę do selektywnej akumulacji enterobakterii, zawierającą bazę białkową, glukozę, monopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantową, a jako bazę białkową hydrolizat trzustkowy mączki rybnej, czyli pepton mięsny , czyli hydrolizat trzustkowy mączki rybnej i peptonu mięsnego (w stosunku 1:1), oczyszczona modyfikowana żółć (PBM) i chlorek sodu w następującym stosunku ilościowym składników, g/l:
Opcja pierwsza:
Opcja druga:
Opcja trzecia:
Wynik techniczny osiąga się poprzez wstępne przygotowanie surowej żółci. W tym celu rodzimą żółć bydlęcą gotuje się i filtruje przez tkaninę filtracyjną (pas) w punktach izoelektrycznych, przy każdej wartości pH, w celu wytrącenia białek i peptydów wielkocząsteczkowych. Ostatni etap przygotowania żółci polega na adsorpcji zanieczyszczeń przez węgiel aktywny, dodaniu obliczonej ilości dipodstawionego fosforanu sodu w przeliczeniu na zawartość suchej masy, gotowaniu i filtracji. Eliminuje to dodatkowy dodatek fosforanu sodu do podłoża, zapewniając wysoką pojemność buforową gotowego podłoża i jego przezroczystość. Zrównoważony skład składników podłoża, w tym hydrolizowana mączka rybna trzustkowa (PGHM), jako białkowa baza odżywcza, zapewnia dobry wzrost i selektywne właściwości bulionu Mossel.
Metoda produkcji bulionu Mossel polega na mieszaniu suchych składników, g/l:
Hydrolizat trzustkowy mączki rybnej lub peptonu mięsnego zaspokaja potrzeby wzrostu mikroorganizmów w zakresie odżywiania azotem. Wstępne przygotowanie żółci bydlęcej pozwala na otrzymanie oczyszczonej modyfikowanej żółci suchej (PBM), która zapewnia wysoką pojemność buforową i przezroczystość gotowej pożywki, właściwości hamujące wobec niepożądanej towarzyszącej florze bakteryjnej oraz selektywną akumulację enterobakterii, która nie jest hamowana w wyniku tworzenia się kwaśnych produktów przemiany materii.
Różnica pomiędzy proponowanym podłożem a prototypem polega na możliwości wykorzystania, obok peptonu mięsnego, hydrolizatu trzustkowego mączki rybnej jako bazy białkowej. Technologia przygotowania żółci surowej przy użyciu dipodstawionego fosforanu sodu eliminuje jej dodatkowy dodatek do pożywki. Stosunek ilościowy składników pożywki, jej pH zapewniają zachowanie przez pożywkę dobrych właściwości wzrostowych, efektywności akumulacji enterobakterii oraz działania hamującego na towarzyszącą jej mikroflorę. Przygotowane podłoże pozostaje sterylne przez co najmniej 10 dni
Aby uzyskać wynik techniczny na etapie produkcji oczyszczonej modyfikowanej żółci (PBM), żółci po wytrąceniu białek w punktach izoelektrycznych, adsorpcji zanieczyszczeń na węglu aktywnym z dodatkiem dwuzasadowego fosforanu sodu w ilości 12,0 g na każde 20,0 g żółci w przeliczeniu na suchą masę, suszonej w suszarce w wibracyjnym złożu fluidalnym A1-FMU.
Przykład 1. Aby przygotować pożywkę według pierwszego wariantu należy odważyć porcję następujących składników, g/l:
Proponowane podłoże przezroczyste, zielone, zapewnia wzrost i akumulację następujących szczepów testowych z rodziny Enterobacteriaceae po zaszczepieniu 0,5 ml zawiesiny drobnoustrojów z rozcieńczenia 10 -7:
E. coli O55:K59 3912/41
S. flexneri 1a 8516
S. typhimurium 79
K. zapalenie płuc 418
K. zapalenie płuc 3534/51
Proponowane podłoże w znaczący sposób hamuje rozwój mikroorganizmów Gram-dodatnich, w szczególności S. aureus Wood-46, już od rozcieńczenia 10 -1.
Szczepy testowe mikroorganizmów służących do kontroli środowiska uzyskano z działu hodowli kulturowych Federalnej Instytucji Budżetowej Nauki Państwowego Centrum Naukowego Medycyny i Biologii.
Przygotuj standardową zawiesinę hodowli każdego szczepu testowego odpowiadającą 10 jednostkom standardowej próbki zmętnienia OSO 42-28-85 P, używając sterylnego 0,9% roztworu chlorku sodu. Powstałe zawiesiny hodowli rozcieńcza się dziesięciokrotnie (4,5 ml 0,9% roztworu chlorku sodu z 0,5 ml zawiesiny drobnoustrojów) do rozcieńczenia 10 -7 (w przypadku S. aureus Wood-46 - do rozcieńczenia 10 -1) i wykorzystuje dla środowiska kontrolnego.
W celu określenia właściwości wzrostowych inokulację przeprowadza się za pomocą 0,5 ml zawiesiny drobnoustrojów każdego szczepu testowego z rozcieńczenia 10 -7 w 5,0 ml bulionu Mossela, tj. Pożywka 10 mc/ml. Uprawy inkubowano w temperaturze (37±1)°C przez 20-24 h. Wyniki kontroli biologicznej próbek laboratoryjnych bulionu Mossel na zestawie szczepów testowych przedstawiono w tabeli 2.
Przykład 2. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 1.
Przykład 3. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 1.
Wyniki kontroli biologicznej przedstawiono w tabeli 2 i są one podobne do wyników badań w przykładzie 1.
Przykład 4. Aby przygotować bulion Mossela według opcji drugiej, należy odważyć porcję następujących składników, g/l:
Próbki miesza się w 1 litrze wody destylowanej, rozlewa do probówek o pojemności 5 ml i sterylizuje w autoklawie w temperaturze 121°C przez 5 minut.
Przykład 5. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 4.
Wyniki kontroli biologicznej przedstawiono w tabeli 3 i są one zbliżone do wyników badań przykładów 1, 2, 3 według opcji 1.
Przykład 6. Aby przygotować bulion Mossela według opcji trzeciej, należy odważyć porcję następujących składników, g/l:
Próbki miesza się w 1 litrze wody destylowanej, rozlewa do probówek o pojemności 5 ml i sterylizuje w autoklawie w temperaturze 121°C przez 5 minut.
Wyniki kontroli biologicznej bulionu Mossela zgodnie z opcją 3 przedstawiono w tabeli 3 i są one podobne do wyników badań w przykładach 1, 2, 3.
Przykład 7. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 6.
Wyniki kontroli biologicznej przedstawiono w tabeli 3 i są one podobne do wyników badań w przykładach 1, 2, 3.
Przykład 8. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 1.
Wyniki kontroli biologicznej przedstawiono w tabeli 2.
Ocena jakości proponowanego podłoża do selektywnej akumulacji enterobakterii z naruszeniem stosunku ilościowego składników:
Przykład 9. Pożywkę przygotowano zgodnie z przykładem 1.
Wyniki kontroli biologicznej przedstawiono w tabeli 2. Naruszenie proporcji ilościowych składników pożywki w przykładach 8, 9 prowadzi do pogorszenia właściwości wzrostowych i hamujących, a w konsekwencji do spadku współczynnika efektywności pożywki nagromadzenie enterobakterii.
Z tabel porównawczych charakterystyk zwalczania biologicznego (tabele 2, 3) jasno wynika, że proponowana pożywka zgodnie z przykładami 1-7 ma dobre właściwości wzrostowe, jest skuteczna w gromadzeniu się enterobakterii i hamuje wzrost gronkowców.
Wizualna rejestracja wyników akumulacji enterobakterii pod koniec okresu inkubacji upraw wykazała identyczne wyniki w pożywce testowej i kontrolnej.
Zmiana stosunku ilościowego składników środowiska prowadzi do naruszenia biologicznych wskaźników jakości proponowanego środowiska.
Zatem w przypadku przygotowania pożywki według przykładów 8, 9 obserwuje się zmniejszenie efektywności akumulacji enterobakterii i hamujące działanie pożywki na S. aureus Wood-46.
Aby uzyskać dane dotyczące skuteczności bulionu Mossela, inokulowane probówki każdego szczepu testowego zawierającego około 10 mc/ml - (szczepienie zerowe) inkubowano w temperaturze (37±1)°C przez 3 godziny. Aby określić dawkę inokulum 0 1 ml zawiesiny drobnoustrojów każdego badanego szczepu z rozcieńczenia 10 -7 wysiano na płytki Petriego z agarem GRM. Po inkubacji plonów w pożywce akumulacyjnej zawartość probówek wymieszano i przeprowadzono podobny wysiew na agarze GRM.
Po 18-20 godzinach inkubacji upraw na agarze GRM w temperaturze (37±1)°C zliczano powstałe kolonie. Wskaźnik wydajności obliczono poprzez zwiększenie liczby kolonii po inkubacji hodowli w podłożu akumulacyjnym do liczby kolonii przy zerowym zaszczepieniu.
Charakterystykę porównawczą skuteczności bulionu Mossela w opcji 1 przedstawiono w tabeli 3. Wyniki efektywności akumulacji enterobakterii w bulionie Mossela przygotowanej zgodnie z opcją 2 są podobne i porównywalne z wynikami uzyskanymi podczas badania bulionu Mossela, opcją 1.
W ten sposób opracowano krajową konkurencyjną suchą pożywkę do selektywnego wzbogacania enterobakterii, która ma wiele zalet:
wydajność akumulacji enterobakterii jest 1,5-2,0 razy wyższa niż w środowisku komercyjnym;
współczynnik hamowania przeciwko gronkowcom jest ponad 100 razy wyższy niż w przypadku komercyjnego bulionu wzbogacającego;
pożywka jest łatwa do przygotowania;
opracowano technologię klarowania żółci w punktach izoelektrycznych przy użyciu węgla aktywnego i dipodstawionego fosforanu sodu, co eliminuje jej dalsze dodawanie do pożywki i zapewnia przezroczystość gotowego produktu;
eliminuje się potrzebę stosowania bezwodnego dipodstawionego fosforanu sodu do produkcji suchego preparatu;
możliwość stosowania hydrolizatu trzustkowego mączki rybnej wraz z peptonem mięsnym przy zachowaniu właściwości wzrostowych i selektywnych;
| Tabela 1 | |||||
| Bulion akumulacyjny dla enterobakterii wg Mossela | |||||
| NIE. | Nazwa komponentów | Bulion EO Mossel EE Rosół, Mossel HiMedia | Bulion enterobakteryjny wzbogacony według Mossel LLC „GEM” | Bulion Mossel do wzbogacania enterobakterii (Enterobacteria Erichment Broth-Mossel OFS 42-0067-07) | |
| 1 | Hydrolizowana żelatyna trzustkowa | - | - | 10,0 | 10,0 |
| 2 | Pepton mięsny | 10,0 | 10,0 | - | - |
| 3 | Monohydrat glukozy | 5,5 | 5,0 | 5,0 | 5,0 |
| 4 | Żółć wołowa | 20,0 | 20,0 | 20,0 | 20,0 |
| 5 | Dipodstawiony fosforan sodu | 8,0 | 6,45 | 7,0 | 8,0 |
| 6 | Monopodstawiony fosforan potasu | 2,0 | 2,0 | 3,0 | 2,0 |
| 7 | Diamentowa zieleń | 0,015 | 0,0135 | 0,015 | 0,015 |
| pH przygotowanego podłoża | 7,2±0,2 | 7,2±0,2 | 7,2±0,2 | 7,2±0,2 |
| Tabela 2 | ||||||||
| Charakterystyka porównawcza biologicznego zwalczania bulionu Mossela na bazie hydrolizatu trzustkowego mączki rybnej, g/l | ||||||||
| NIE. | Nazwa szczepu testowego | Hodowla | opcja 1 | opcja 1 | opcja 1 | opcja 1 | opcja 1 | Bulion wzbogacający Mossel dla enterobakterii (Mossel Broth) Merck |
| Przykład 1 | Przykład 2 | Przykład 3 | Przykład 8 | Przykład 9 | ||||
| 1 | E. coli 25922 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | ++ | +++ |
| 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | ||
| 2 | E. coli 055:K59 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | ++ | +++ osad |
| 3912/41 | 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | |
| 3 | S. flexneri la 8516 | 10 -7 | ++ | ++ | ++ | + | + | ++ |
| 10 -6 | ++ | ++ | ++ | ++ | + | +++ | ||
| 4 | S. typhimurium 79 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | ++ | +++ |
| 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | ++ | +++ | ||
| 5 | K. zapalenie płuc | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | ++ | +++ |
| 418 | 10- 6 | +++ | +++ | +++ | +++ | ++ | +++ gaz | |
| 6 | S. aureus-Wood-46 | 10 -1 | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | + słabe rozproszone zmętnienie podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | |
| Tabela 3 | |||||||
| Charakterystyka porównawcza biologicznego zwalczania bulionu Mossela na bazie peptonu mięsnego i mieszaniny PGRM z peptonem mięsnym w stosunku 1:1, g/l | |||||||
| NIE. | Nazwa szczepu testowego | Hodowla | Opcja 2 | Opcja 2 | Opcja 3 | Opcja 3 | Bulion wzbogacający Mossel dla enterobakterii (Mossel Broth) Merck |
| Przykład 4 | Przykład 5 | Przykład 6 | Przykład 7 | ||||
| 1 | E. coli 25922 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | +++ |
| 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | ||
| 2 | E. coli 055:K59 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | ++ | +++osad |
| 3912/41 | 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | |
| 3 | S. flexneri la 8516 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ |
| 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | ||
| 4 | S. typhimurium 79 | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ |
| 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ | ||
| 5 | K. zapalenie płuc | 10 -7 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++ |
| 418 | 10 -6 | +++ | +++ | +++ | +++ | +++gaz | |
| 6 | S. aureus-Wood-46 | 10 -1 | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża | Brak rozproszonego zmętnienia podłoża |
| **+++ - doskonały wzrost przy rozproszonym zmętnieniu podłoża; ++ - dobry wzrost przy rozproszonym zmętnieniu podłoża; |
1. Pożywka do selektywnej akumulacji enterobakterii, sucha (Mossel Broth), zawierająca bazę białkową, glukozę, monopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantową, znamienna tym, że zawiera hydrolizat trzustkowy mączki rybnej jako bazę białkową, dodatkowo zawierającą oczyszczoną modyfikowaną żółć (PBM) i chlorek sodu w następującym stosunku ilościowym składników, g/l:
2. Pożywka do selektywnej akumulacji enterobakterii, sucha (bulion Mossela), zawierająca pepton mięsny, glukozę, monopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantową, znamienna tym, że zawiera oczyszczoną modyfikowaną żółć (PBM) i chlorek sodu w następującym stosunku ilościowym: składniki, g /l:
3. Pożywka do selektywnej akumulacji enterobakterii, sucha (bulion Mossela), zawierająca bazę białkową, glukozę, monopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantową, charakteryzująca się tym, że baza białkowa zawiera hydrolizat trzustkowy mączki rybnej i pepton mięsny w 1: 1, dodatkowo zawiera oczyszczoną modyfikowaną żółć (PBM) i chlorek sodu w następującym stosunku ilościowym składników, g/l:
Podobne patenty:
Wynalazek dotyczy zestawu starterów i sond oligonukleotydowych do identyfikacji i podtypowania DNA bakterii Pasteurella multocida serotypów A, B, D, E, F metodą PCR w czasie rzeczywistym.
Wynalazek dotyczy zestawu znakowanych fluorescencyjnie sond oligonukleotydowych do typowania szczepów Burkholderia mallei. Sondy zawarte w zestawie mają strukturę spinki do włosów z fluoroforem i wygaszaczem fluorescencji na końcach i stanowią uzupełnienie produktów reakcji amplifikacji ze starterami.
Wynalazek dotyczy mikrobiologii żywności, w szczególności wytwarzania pożywki do oznaczania mikroorganizmów wytwarzających lipazy w wyrobach cukierniczych.
Wynalazek dotyczy medycyny i może być stosowany do identyfikacji mikroorganizmów wytwarzających ureazę, w szczególności Helicobacter pylori. W tym celu przeprowadza się szybką analizę na dyskach diagnostycznych w celu określenia aktywności ureazy w próbkach.
Grupa wynalazków dotyczy biochemii. Sposób otrzymywania wzorcowej próbki zmętnienia zawiesin bakteryjnych, wzorcowej próbki zmętnienia zawiesin bakteryjnych, zastosowanie wzorcowej próbki zmętnienia zawiesin bakteryjnych oraz zestawu zawierającego wzorcową próbkę zmętnienia zawiesin bakteryjnych proponuje się zawiesiny bakteryjne.
Przedstawiono zestawy sond i starterów oligonukleotydowych, mikrochip biologiczny oraz system testowy do identyfikacji i typowania wirusów grypy A i B. Scharakteryzowany system testowy zawiera: zestaw odczynników do izolacji RNA wirusa grypy z ludzkiego materiału biologicznego; zestaw odczynników do przeprowadzenia amplifikacji PCR połączonej z odwrotną transkrypcją w celu utworzenia znakowanych fluorescencyjnie fragmentów genomu wirusa grypy, zawierających opisane startery oligonukleotydowe; zestaw odczynników do hybrydyzacji fragmentów DNA uzyskanych po amplifikacji na biochipie zawierającym elementy z unieruchomionymi opisanymi sondami oligonukleotydowymi; oraz, jeśli to konieczne, kontrole negatywne i pozytywne.
Wynalazek dotyczy biotechnologii, w szczególności oznaczania zawartości mikroorganizmów w różnych obiektach i środowiskach. Metoda polega na sprzęganiu bakterii ze znacznikiem elektrochemicznym, jakim jest Fe0, MgFe2O4 lub Fe3O4, przeprowadzanym w środowisku wodnym pod określonymi parametrami.
Wynalazek dotyczy dziedziny mikrobiologii medycznej i biotechnologii, w szczególności mikrobiologicznej diagnostyki laboratoryjnej chorób zakaźnych. Pożywka zawiera trypton, ekstrakt drożdżowy, glukozę, chlorek sodu, ludzkie erytrocyty 0(I) grupy Rh(+), siarczan żelaza(II), agar Difco i wodę destylowaną w określonych proporcjach składników.
Wynalazek dotyczy biotechnologii i może być stosowany w badaniach bakteriologicznych w zakresie izolacji i identyfikacji bakterii z rodzaju Klebsiella oraz wytwarzania pożywek do tych badań.
Zgłoszono grupę wynalazków związanych z przemysłem spożywczym i fermentacyjnym: kultury kombucha Fungi Tea, Medusomyces gisevii alfa i Medusomyces gisevii, a także sposób wytwarzania sfermentowanej bazy do produkcji kwasu chlebowego, sposób wytwarzania kultury kombucha płyn oraz sposób wytwarzania napojów z soku warzywnego lub warzyw fermentowanych.
Wynalazek dotyczy biotechnologii, mikrobiologii i rolnictwa i może być stosowany do otrzymywania preparatu bakteryjnego przeciwko chorobom roślin wywoływanym przez grzyby fitopatogenne z rodzaju Fusarium, Microdochium, Pyrenophora i Puccinia. Kompozycja immunogenna do leczenia lub zapobiegania Clostridium difficile, sposób jej wytwarzania i sposób indukowania odpowiedzi immunologicznej na c. trudne // 2550271
Proponuje się kompozycję immunogenną do stosowania w leczeniu lub zapobieganiu chorobom związanym z Clostridium difficile, sposób wytwarzania takiej kompozycji przez zmieszanie jej składników składowych oraz sposób indukowania odpowiedzi immunologicznej na C.
Wynalazek dotyczy dziedziny biotechnologii. Szczep gatunku Microbacterium zdeponowany jest pod numerem rejestracyjnym BKM Ac-2615D, stosowany do oczyszczania zbiorników wodnych słonawych i morskich. Wynalazek zapewnia zwiększone niszczenie frakcji naftenowych, związków heterocyklicznych i żywic, a także związków poliaromatycznych, benzo(a)pirenu i benzo(a)antracenu w oleju. 1 ryc., 2 tablice, 1 egz.
Grupa wynalazków dotyczy biotechnologii. Opcje pożywki do selektywnej akumulacji enterobakterii zawierają hydrolizat trzustkowy mączki rybnej lub pepton mięsny lub hydrolizat trzustkowy mączki rybnej i pepton mięsny, oczyszczoną modyfikowaną żółć, chlorek sodu, glukozę, jednopodstawiony fosforan potasu i zieleń brylantową w dany współczynnik. Wynalazki umożliwiają zwiększenie efektywności akumulacji enterobakterii, selektywnych właściwości pożywki i uproszczenie sposobu otrzymywania pożywki. 3 n.p. akta, 3 tablice, 9 pr.
